بر اساس معادله (۳-۳۴) نرخ تغییر CO در فاز مایع (که با یا به صورت تغییرات فشار جزئی CO در فاز مایع نشان داده می شود) برابر است با نرخ انتقال CO به فاز مایع منهای نرخ مصرف آن در فاز مایع در نتیجه تبدیل بیوکاتالیستی. از این رابطه می توان برای تعیین نرخ مصرف ویژه CO، q_CO،که در معادلات کینتیکی کاربرد دارد استفاده کرد.
(( اینجا فقط تکه ای از متن درج شده است. برای خرید متن کامل فایل پایان نامه با فرمت ورد می توانید به سایت nefo.ir مراجعه نمایید و کلمه کلیدی مورد نظرتان را جستجو نمایید. ))

فصل چهارم: نتایج آزمایشها و تحلیل داده ها
مقدمه
در این فصل به ارائه نتایج آزمایشها و بررسی و تحلیل یافته های آزمایشگاهی پرداخته می شود. نتایج مربوط به آزمایشهای ناپیوسته در غالب تاثیر سوبسترای آلی روی عملکرد محیط کشت، نقش همزمان عوامل کاهنده و pH در محیط کشت باکتری، تاثیر فشار گاز سنتز در محیط کشت ناپیوسته لانگالی و بررسی کینتیک آزمایش ناپیوسته ارائه می گردد. در ادامه، نتایج مربوط به آزمایشهای پیوسته تخمیر گاز سنتز در بیوراکتور ارائه شده و تاثیر نرخ رقیق سازی، شدت جریان گاز سنتز و دور همزن بیوراکتور روی عملکرد باکتری در فرایند تخمیر مورد بحث و بررسی قرار می گیرد و با بهره گرفتن از یافته های آزمایشگاهی ضرایب انتقال جرم و پارامترهای مربوط به بازده فرایند محاسبه می گردند.
تاثیر سوبسترای آلی
باکتری لانگالی می تواند انواع مختلفی از سوبستراها را به اتانول و استات تخمیر کند. این باکتری مسیر متابولیکی پیچیده ای از خود نشان می دهد که هر دو فاز استوژنیک (تولید اسید) و سالونتوژنیک (تولید حلال) را شامل می شود. به منظور بررسی تاثیر سوبستراهای آلی مختلف در تحریک مسیر متابولیکی باکتری به سمت فاز سالونتوژنیک، از چهار سوبسترای آلی فروکتوز، گلوکز، اتانول و استات در محیط کشت ناپیوسته باکتری لانگالی استفاده شد و نقش آنها در رشد سلول و تولید محصول مطالعه گردید.
رشد سلول و مصرف سوبسترا
رشد باکتری لانگالی در محیط کشت ناپیوسته با سوبستراهای فروکتوز، گلوکز، اتانول و استات بررسی گردید. در فرایند رشد هتروترفیک باکتری روی گلوکز و فروکتوز، سوبسترای آلی از طریق مسیر متابولیکی امدن- میرهوف- پاراناس^[۲۷۱] که به عنوان فرایند گلیکولایسیس^[۲۷۲] نیز شناخته می شود به پیروات تبدیل می شوند. سپس، تبدیل اکسایشی پیروات، استیل-کوآنزیم A تولید می کند که یک ترکیب واسطه و مهم در چرخه متابولیکی استوژنهاست. باکتری از استیل-کوآنزیم A تولید شده برای تولید سلول و انرژی از طریق فرایندهای آنابولیک^[۲۷۳] و کاتابولیک^[۲۷۴] استفاده می کند. در مسیر آنابولیک، مقدار کمی از استیل-کوآنزیم A به صورت کاهشی کربوکسیله می شود تا در حضور آنزیم پیروات: فردوکسین اکسیدورداکتاز^[۲۷۵] پیروات تولید کند. سپس پیروات تولید شده به فسفوانول پیروات^[۲۷۶] تبدیل می گردد که یک ترکیب واسطه برای تشکیل اجزای سلولی است [۱۱۶]. شکلهای ۴-۱ و ۴-۲ رشد باکتری لانگالی را روی فروکتوز و گلوکز و مصرف این سوبستراها را نشان می دهند.
شکل ‏۴‑۱: دانسیته سلولی، مصرف سوبسترا و تولید محصول در لانگالی رشد داده شده با فروکتوز
▼: فروکتوز، ♦: دانسیته سلولی، ▲: استات، ■: اتانول و ●: استون
شکل ‏۴‑۲: دانسیته سلولی، مصرف سوبسترا و تولید محصول در لانگالی رشد داده شده با گلوکز
▼: گلوکز، ♦: دانسیته سلولی، ▲: استات، ■: اتانول و ●: استون
همان طور که در این شکلها مشاهده می گردد، مصرف فروکتوز و گلوکز توسط باکتری بسیار سریع بود. در مدت زمان ۲۴ ساعت، میزان تبدیل^[۲۷۷] ۸۹ و ۷۹% برای فروکتوز و گلوکز حاصل گردید. بازده رشد لانگالی روی این سوبستراها به ترتیب ۴۶/۴۵ و ۸۲/۴۱ گرم سلول به ازای هر مول فروکتوز و گلوکز بوده است.
باکتری لانگالی این توانایی را دارد که هم اتانول را به عنوان سوبسترا برای رشد سلول مصرف کند و هم اینکه آن را به عنوان محصول متابولیکی در طی فرایند تخمیر تولید کند [۲۸, ۴۶]. فرایند مصرف اتانول و تولید آن توسط لانگالی از طریق مسیرهای متابولیکی مختلف به واسطه استیل-کوآنزیم A و استالدهید انجام می گیرد [۲۸]. رشد باکتری لانگالی روی اتانول در شکل ۴-۳ نشان داده شده است. مصرف اتانول به عنوان سوبسترا در مقایسه با فروکتوز و گلوکز به کندی صورت گرفته و تا ۹۶ ساعت ادامه یافت. در آزمایش ناپیوسته کشت باکتری روی اتانول، میزان تبدیل ۵۶% حاصل گردید و بازده رشد باکتری ۷۶/۳ گرم سلول به ازای هر مول اتانول بوده است.

شکل ‏۴‑۳: دانسیته سلولی، مصرف سوبسترا و تولید محصول در لانگالی رشد داده شده با اتانول
♦: دانسیته سلولی، ▲: استات، ■: اتانول و ●: استون
بر اساس گزارشهای پیشین [۱۰۳]، در هنگام کشت باکتری لانگالی روی استات سدیم هیچ رشدی مشاهده نگردید، اما نتایج این بررسی نشان داد که باکتری لانگالی می تواند استات را به عنوان سوبسترای آلی مصرف کرده و رشد کند. رشد لانگالی روی استات در شکل ۴-۴ نشان داده شده است. مصرف استات مدت کوتاهی پس از تلقیح آغاز شده و پس از رسیدن به میزان تبدیل ۶۲% در زمان ۲۴ ساعت، مصرف استات متوقف گردید. در این آزمایش، بازده ۶۲/۵ گرم سلول به ازای هر مول استات حاصل شد.
شکل ‏۴‑۴: دانسیته سلولی، مصرف سوبسترا و تولید محصول در لانگالی رشد داده شده با استات
♦: دانسیته سلولی، ▲: استات، ■: اتانول و ●: استون
مسیر متابولیکی پیشنهاد شده برای لانگالی
در فرایند تخمیر، استیل-کوآنزیم A تولید شده وارد مسیر کاتابولیکی می شود تا ATP تولید کند و بدین ترتیب انرژی لازم برای بقاء سلول را فراهم سازد. در مسیر کاتابولیکی، استیل-کوآنزیم A به عنوان ماده اولیه برای سنتز اسیدهای چرب فرار و الکلها مصرف می شود. در فرایند رشد ناپیوسته استوژنها، باکتری فرایند تخمیر دو فازی از خود نشان می دهد که شامل فازهای استوژنیک (تولید اسید) و سالونتوژنیک (تولید حلال) است [۱۱۷]. باکتری اسیدهای چرب فراری مانند استات را در مراحل اولیه رشد نمایی تولید می کند. هنگامی که میزان اسید موجود در محیط به حد آستانه^[۲۷۸] رسید و pH محیط کاهش یافت، مسیر متابولیکی باکتری کمی قبل از ورود به فاز سکون به سمت تولید حلال، عمدتا اتانول، تغییر می کند. مسیر متابولیکی پیشنهاد شده برای رشد هتروتروفیک باکتری لانگالی و تولید محصول توسط آن در شکل ۴-۵ ارائه گردیده است.
شکل ‏۴‑۵: مسیر متابولیکی پیشنهاد شده برای رشد هتروتروفیک باکتری لانگالی و تولید محصول
آنزیمهایی که در واکنشها دخالت دارند به اختصار عبارتند از: ACACCT: استیل-کوآنزیم A: استواستیل-کوآنزیم A ترنسفراز^[۲۷۹]، ACAT: استیل-کوآنزیم A استیل ترنسفراز^[۲۸۰]، ACS: استیل-کوآنزیم A سنتتاز^[۲۸۱]، ADC: استواستات دی کربوکسیلاز^[۲۸۲]، ADH: استالدهید/الکل دی هیدروژناز^[۲۸۳]، AK: استات کیناز^[۲۸۴]، BCDH: بوتیریل-کوآنزیم A دی هیدروژناز^[۲۸۵]، BHBD: بتا-هیدروکسی بوتیریل-کوآنزیم A دی هیدروژناز^[۲۸۶]، BK: بوتیرات کیناز^[۲۸۷]، Crt: کروتوناز^[۲۸۸]، PFOR: پیروات:فردوکسین اکسیدورداکتاز^[۲۸۹]، PTA: فسفوترانس استیلاز^[۲۹۰]، PTB: فسفوترانس بوتیریلاز^[۲۹۱]، SADH: الکل دی هیدروژناز ثانویه^[۲۹۲]
همان طور که قبلا اشاره شد، گلوکز و فروکتوز از طریق مسیر میکروبی گلیکولایسیس به پیروات تبدیل می گردند. پیروات تولید شده توسط آنزیم پیروات: فردوکسین اکسیدورداکتاز به استیل-کوآنزیم A، CO₂ و فردوکسین کاهش یافته تبدیل می گردد [۲۸]. مصرف اتانول به عنوان سوبسترا از طریق آنزیم استالدهید/الکل دی هیدروژناز^[۲۹۳] در دو مرحله انجام می گیرد که در آن ابتدا اتانول به استالدهید و سپس به استیل-کوآنزیم A تبدیل می شود [۲۸]. استات به عنوان سوبسترای آلی می تواند مستقیما در حضور آنزیم استیل-کوآنزیم A سنتتاز^[۲۹۴] به استیل-کوآنزیم A تبدیل شده و یا به صورت غیر مستقیم ابتدا توسط آلدهید اکسیدورداکتاز^[۲۹۵] و با فردوکسین کاهش یافته به استالدهید کاهیده شده و سپس به استیل-کوآنزیم A تبدیل شود. با توجه به اینکه مصرف استات بسیار سریعتر از اتانول بود، چنین فرض شد که استات مستقیما به استیل-کوآنزیم A تبدیل می شود.
استیل-کوآنزیم A تولید شده که در تقاطع مسیر کاتابولیکی و آنابولیکی قرار دارد یک ماده اولیه ایده ال برای سنتز اجزای سلولی و همچنین اتانول و استات است. در مسیر کاتابولیکی، استیل-کوآنزیم A (CH₃COS-CoA) ابتدا توسط آنزیم فسفوترانس استیلاز^[۲۹۶] به ترکیب واسطه استیل-فسفات(CH₃COO-P₃^2-) تبدیل می گردد[۱۱, ۷۴] :
CH₃COS-CoA + Pi → CH₃COO-P₃^2- + HS-CoA (4-1)
سپس، استیل-فسفات به استات تبدیل می شود در حالیکه یک مولکول ADP در حضور آنزیم استات کیناز^[۲۹۷] به ATP فسفریله می شود [۷۴]:
CH₃COO-P₃^2- + ADP → CH₃COOH + ATP (4-2)
برای تولید اتانول، NADH توسط ارگانیزم مصرف می شود تا در حضور آنزیم استالدهید دی هیدروژناز^[۲۹۸]، استالدهید (CH₃CHO) تولید کند [۱۱]:
CH₃COS-CoA + NADH + H⁺ → CH₃CHO + NAD⁺ + HS-CoA (4-3)
CH₃CHO + NADH + H⁺ → CH₃CH₂OH + NAD⁺ (۴-۴)
در نهایت، آنزیم الکل دی هیدروژناز^[۲۹۹] استالدهید را به اتانول تبدیل می کند. مسیر متابولیکی تبدیل استیل-کوآنزیم A به محصولات نهایی برای بیشتر استوژنها مسیر شناخته شده ای است.
تولید محصول
رشد ناپیوسته باکتری لانگالی با تولید استات و اتانول و مقادیر بسیار کمی استون مطابق واکنش زیر همراه بود:
Fructose or Glucose + 2ADP +2P_i → ۲ethanol + 2ATP + 2CO₂ (۴-۵)
Fructose or Glucose + 3ADP + 3Pi → ۳acetate + 3ATP (4-6)
توزیع محصولات نهایی هنگام رشد لانگالی روی فروکتوز در شکل ۴-۱ نشان داده شده است. در فاز نمایی رشد سلول، استات تولید گردید و سپس مسیر متابولیکی به سمت تولید حلال، عمدتا اتانول و مقادیر جزئی استون شیفت پیدا کرد. در ۶ ساعت اول فرایند تخمیر، کاهش شدیدی در pH محیط کشت از ۹/۵ تا ۵/۴ ایجاد شد که به تولید اسید مربوط می شد. پس از گذشت ۲۴ ساعت، غلظت استات در محیط به ۵/۲۴ میلی مول در لیتر رسید و تقریبا در طول فرایند تخمیر ناپیوسته ثابت باقی ماند. تولید اتانول در فاز رشد نمایی آغاز گردیده و در فاز سکون رشد سلول به میزان قابل توجهی افزایش یافت. با توجه به مسیر متابولیکی استیل-کوآنزیم A، تولید اتانول موجب افزایش مصرف ATP می گردد و در نتیجه موجب رشد سلول نخواهد شد [۴۵, ۵۴]. بنابراین، تولید اتانول در شرایط عدم رشد^[۳۰۰] افزایش می یابد. حداکثر میزان اتانول تولید شده با فروکتوز، ۱/۲۷ میلی مول در لیتر بود که پس از ۱۲۰ ساعت حاصل گردید.
شکل ۴-۲ پروفایل تولید استات، اتانول و استون را برای باکتری لانگالی رشد داده شده با گلوکز نشان می دهد. با وجود آنکه دانسیته سلولی بالایی در فاز سکون حاصل گردید اما تولید اتانول توسط سلولها قابل توجه نبود (کمتر از ۶/۵ میلی مول در لیتر). مقادیر بسیار کمی استون نیز در محیط کشت تولید شد. در مقابل، غلظت بالایی از استات (۸/۴۴ میلی مول در لیتر) به عنوان محصول اصلی حاصل گردید. در زمان ۷۲ ساعت، تولید اتانول متوقف شده و غلظت استات در محیط افزایش یافت که می توانست نشانه ای از تغییر مسیر متابولیکی باکتری از فاز سالونتوژنیک به فاز استوژنیک باشد. این مساله تغییر فاز احتمالا به نیاز سلولها به ATP مربوط می شد که موجب افزایش تولید استات گردید. نتایج به دست آمده نشان می دهد که لانگالی گلوکز را عمدتا به استات متابولیز کرد و جریان کربن کمی از گلوکز به اتانول وجود داشت.
تاثیر اتانول به عنوان سوبسترای آلی روی توزیع محصول باکتری لانگالی در محیط کشت ناپیوسته مطالعه گردید و نتایج این بررسی در شکل ۴-۳ ارائه شده است. پس از مصرف اولیه اتانول توسط سلولها، مصرف اتانول متوقف شده و مقدار کمی استات در محیط کشت تولید شد. مقدار استات تولید شده به اندازه ای کم بود (۷/۲ میلی مول) که نتوانست pH محیط کشت را به صورت مطلوبی کاهش دهد. از آنجا که سلولها همچنان در pH رشد (۷-۵) بودند، مقدار بیشتری از اتانول به عنوان سوبسترا در زمان ۷۲ ساعت مصرف گردید. سپس، تولید اتانول همزمان با ورود سلولها به فاز سکون رشد آغاز گردیده و ۲۵ میلی مول در لیتر اتانول در زمان ۱۲۰ ساعت در محیط کشت تولید گردید. تولید اتانول از طریق استیل-کوآنزیم A و مصرف معادلهای کاهنده (NADH) انجام گرفت تا در حضور آنزیم استالدهید دی هیدروژناز، استالدهید تولید شده و سپس استالدهید توسط آنزیم الکل دی هیدروژناز به اتانول تبدیل گردد. استات تولید شده نیز می توانست توسط آنزیم آلدهید اکسیدورداکتاز و همراه با فردوکسین کاهش یافته به استالدهید کاهیده شده و در نهایت به اتانول تبدیل شود [۲۸].
توزیع محصولات در هنگام رشد لانگالی روی استات در شکل ۴-۴ ارائه گردیده است. استات به عنوان سوبسترای آلی برای رشد سلول استفاده گردید. هرچند، تولید استات پس از ۲۴ ساعت متوقف گردیده و تولید اتانول آغاز شد. اتانول و مقادیر جزئی استون تنها متابولیتهای فرایند تخمیر استات بودند. محتمل ترین مسیر متابولیکی برای این انجام این فرایند، تبدیل استات به استیل-کوآنزیم A و سپس کاهش آن به اتانول مطابق واکنش زیر بود [۱۱۸]:
Acetate + 2NADH + ATP→ Ethanol + 2NAD⁺ + ADP + Pi (4-7)
با وجود آنکه حضور استات در محیط کشت موجب تغییر مسیر متابولیکی سلولها به سمت فاز تولید حلال گردید اما تولید اتانول قابل توجه نبود (۵/۳ میلی مول در لیتر). اندازه گیری تغییرات pH محیط کشت در طول فرایند تخمیر نشان داد که پس از گذشت زمان ۲۴ ساعت، pH از ۹/۵ به حدود ۸/۶ افزایش یافت که این pH برای تولید اتانول مناسب نبود. بر اساس گزارشهای پیشین [۷۸]، pH حدود ۵/۴-۴ که شرایط عدم رشد سلولها را ایجاد می کند pH مناسبی برای تولید اتانول توسط لانگالی است.
خلاصه ای از عملکرد باکتری لانگالی با سوبستراهای مختلف بر اساس بازده مصرف سوبسترا، رشد سلول و تولید محصول در جدول ۴-۱ ارائه گردیده است. بیشترین بازده تولید سلول از سوبسترا (۴۶/۴۵ Y_X/S= گرم بر مول) و میزان تبدیل سوبسترا (۶۹/۸۸%) با فروکتوز حاصل شد. همچنین استفاده ار فروکتوز به عنوان سوبسترا منجر به تولید اتانول و استات با نسبت مولی یکسان (۰۳/۱ EtOH/Ac=مول به مول) گردید. بازده تجربی تولید محصول با گلوکز (۲۹/۲Y_P/S,_exp= مول به مول) به مقدار تئوری آن (۶/۲= Y_P/S,_thمول به مول) نزدیک بود اما استات محصول نهایی غالب بود و فقط مقدار بسیار کمی اتانول در محیط کشت تولید شد (۱۲/۰ EtOH/Ac= مول به مول). رشد باکتری روی اتانول کند و ضعیف بود (۷۶/۳ Y_X/S=گرم بر مول) اما بازده تولید محصول از بیومس (۸۹/۱۱۷Y_P/X= میلی مول به گرم) نسبتا قابل توجه بود. با وجود آنکه نسبت بالایی از اتانول به استات (۶۵/۱۶ EtOH/Ac=مول به مول) با این سوبسترا تولید شد اما میزان اتانول تولید شده (۲۵ میلی مول در لیتر) در مقایسه با اتانول مصرف شده (۶۰ میلی مول در لیتر) در آزمایش ناپیوسته ۱۲۰ ساعته نسبتا کم بود. استات برای تولید محصول اصلا مناسب نبود (۰۷/۰ Y_P/S,_exp=مول به مول) و تنها می توانست تا حدودی باعث رشد باکتری شود (۶۲/۵ Y_X/S=گرم بر مول). نتایج به دست آمده نشان داد که فروکتوز بهترین سوبسترای آلی برای رشد سلول و تولید محصول بود.
جدول ‏۴‑۱: بازده مصرف سوبسترا، رشد سلول و تولید محصول در باکتری لانگالی رشد داده شده با سوبستراهای آلی مختلف

میزان تبدیل
EtOH/Ac
q
Y_P/X

فوتوکاتالیست ماده‌ای است که در اثر تابش نور بتواند منجر به بروز یک واکنش شیمیایی شود، درحالی‌که خود ماده، دست خوش هیچ تغییری نشود. فوتوکاتالیست‌ها مستقیماً در واکنش‌های اکسایش و کاهش دخالت ندارند و فقط شرایط مورد نیاز برای انجام واکنش‌ها را فراهم می‌کنند. یک فوتوکاتالیست نیمه‌رسانای ایده آل باید از نظر بیولوژیکی و شیمیایی خنثی باشد، پایداری فوتوکاتالیستی داشته باشد، به سادگی تولید و مورد استفاده قرارگیرد، به طور مؤثری به وسیله نور خورشید فعال شود، به طور مؤثر واکنش راکاتالیز نماید، ارزان باشد و هیچ خطری برای انسان و محیط زیست نداشته باشد. اکسیدروی به فوتوکاتالیست ایده آل نزدیک است وتقریباً همه‌ی خواص فوق را نشان می دهد. که به دلیل قابلیت جذب اشعه فرابنفش به وسیله این ماده است. فوتون‌های فرابنفش پرانرژی ترین ذرات هستند و در بیشتر موارد می‌توانند به سادگی باعث تخریب اجسام گردند که این پدیده معمولاً از طریق شکست پیوندهای شیمیایی در آن‌ها صورت می‌گیرد که به آن تجزیه فوتوشیمیایی می‌گویند. بیشترین استفاده فوتوکاتالیست ZnO ، تجزیه فوتونی ترکیبات آلی است. از ZnO به عنوان فوتوکاتالیست در رفع آلودگی‌ها (ضدعفونی) محیطی گوناگون مانند مواد آلی، ویروس ها، باکتری ها، قارچ ها، جلبک‌ها و سلول‌های سرطانی استفاده می‌شود. دراین حالت، ماده در برخورد با مولکول‌های آلوده کننده آب، هوا و خاک که عموماً مولکول‌های آلی کربنی هستند، آنها را تجزیه کرده و به مواد غیرآلی،CO₂ ، آب و آنیون‌های معدنی بی ضرر تبدیل می‌کند. این کارایی به اکسیداسیون بالای حفره‌ها و رادیکال‌های هیدروکسیل (HO) که به عنوان عوامل اکسیدکننده قوی شناخته می‌شوند، نسبت داده می‌شود. پتانسیل اکسیداسیون این رادیکال ۸/۲ الکترون ولت است که تنها فلوئور از آن بالاتر است.

( اینجا فقط تکه ای از متن پایان نامه درج شده است. برای خرید متن کامل فایل پایان نامه با فرمت ورد می توانید به سایت feko.ir مراجعه نمایید و کلمه کلیدی مورد نظرتان را جستجو نمایید. )

۴-۴ – سلول‌های خورشیدی رنگدانه‌ای
یکی از مهمترین کاربردهای نانو‌ساختارهای اکسید روی در سلول های خورشیدی رنگدانه‌ای ^[۷۳] می‌باشد. تاریخچه ساخت سلول‌های خورشیدی رنگدانه‌ای به نوعی با سلول‌های ساخته شده در سال ۱۹۶۸ آغاز می‌شود که از یک الکترود تک کریستال ZnO در تماس با محلول حاوی رنگدانه آلی ساخته شده بود [۷۹]. در این سلول‌های فوتوالکتروشیمیایی اولیه، بخش اعظم فوتون‌ها با رنگدانه‌های آزاد در محلول جذب می‌شدند اما بیشتر مولکول‌های برانگیخته رنگدانه پیش از تزریق الکترون خود به نیمه‌هادی به تراز پایه باز‌می‌گشتند. اوسا ^[۷۴] و همکارانش، این مشکل را با اتصال رنگدانه رودامین بی ^[۷۵] به سطح الکترودهای SnO₂ و TiO₂ حل کردند [۸۰ و ۸۱]. علیرغم افزایش بازده الکترون، همچنین به دلیل جذب نور ضعیف توسط تک لایه مولکول‌های رنگدانه بر سطح الکترود تخت، جریان کمی در سلول تولید می‌شد. در همان دوره سوبومورا ^[۷۶] و همکارانش نشان دادند که با بهره گرفتن از لایه ZnO میکروکریستال متخلخل به جای تک کریستال ZnO تخت، دستیابی به جریانی با یک مرتبه بزرگی بیشتر امکان پذیر است [۸۲].
۴-۴-۱- اجزای تشکیل دهنده ی سلول خورشیدی حساس شده به رنگدانه
اجزای تشکیل دهنده‌ی سلول خورشیدی حساس شده با رنگ شامل بخش های مهمی همچون زیرلایه (FTO)، فوتو آند (ZnO)، رنگ‌های حساس به نور، الکترولیت اکسایش- کاهش، الکترود شمارشگر (کاتد) می‌باشد که در زیر به طور خلاصه و مفید به نقش آن‌ها اشاره شده است.
۴-۴-۱-۱- زیرلایه
انتخاب زیرلایه برای فوتوآند و کاتد سلول خورشیدی رنگدانه‌ای بستگی به نوع کاربرد و ساختار سلول خورشیدی دارد. بطور کلی، حداقل یکی از زیرلایه‌ها برای ورود نور به سلول خورشیدی، شفاف انتخاب می‌شود. به‌علاوه زیرلایه‌ها باید هدایت کافی برای انتقال حامل‌های بار داشته باشند تا مقاومت سری در مدار ایجاد نکنند. یک زیرلایه استاندارد برای سلول خورشیدی رنگدانه‌ای، از یک شیشه با ضخامت ۲ – ۴ میلی‌متر تشکیل شده است که پوششی از اکسید‌ رسانای شفاف، اغلب اکسید قلع آلاییده شده با فلوئور ^[۷۷] ، با ضخامت کمتر از میکرومتر بر روی آن قرار دارد. مقاومت صفحه‌ای FTO تجاری بین ۵ تا ۱۵ اهم بر واحد سطح می‌باشد. پارامترهای دیگری چون پایداری شیمیایی و گرمایی و قیمت نیز در انتخاب زیرلایه اهمیت دارند [۸۳ و ۸۴].
۴-۴-۱-۲- فوتو آند
فوتوآند سلول خورشیدی رنگدانه‌ای همزمان دو نقش را ایفا می‌کند. اول بستری برای اتصال مولکول‌های رنگدانه و دوم بستری برای انتقال الکترون‌های تزریق شده به الکترود جمع‌ آوری کننده الکترون. برای ایفای مناسب این دو نقش، سطح مؤثر زیاد و تحرک‌پذیری بالای الکترون مورد نیاز است. به‌علاوه، فوتوآند باید از ماده‌ای با پایداری شیمیایی بالا، فراوان و ارزان تشکیل شده یاشد و سمی نیز نباشد. اکسید‌های فلزی مختلفی به این منظور در نظر گرفته شده‌اند که از این میان، اکسیدروی با توجه به کم بودن احتمال بازترکیب الکترون و حفره در آن‌ها، بهترین انتخاب محسوب می‌شوند [۸۵].

۴-۴-۱-۳- الکترولیت
پس از تزریق الکترون به باند هدایت نیمه‌هادی، رنگدانه در حالت اکسیدی باقی می ماند تا زمانی که بار دیگر به حالت پایه برگردد. این اتفاق با حضور یک الکترولیت مایع حاوی گونه‌های اکسایش/کاهش انجام می‌شود. الکترولیت همچنین باید پایداری شیمیایی مناسب و ویسکوزیته کم داشته باشد تا محدودیتی برای نفوذ گونه‌های اکسایش/کاهش در آن ایجاد نشود. در دو دهه گذشته، الکترولیت حاوی گونه‌ اکسایش/ کاهش I^–/ I^–₃به دلیل برهمکنش سریع با رنگدانه اکسید شده و ضریب ‌نفوذ بالا، مرسوم‌ترین الکترولیت مورد استفاده در سلول خورشیدی رنگدانه‌ای بوده است [۸۶].
۴-۴-۱-۴- الکترود شمارشگر (کاتد)
وظیفه الکترود شمارشگر^[۷۸] کاهش گونه‌های I^–₃و تبدیل آن‌ها به گونه‌های I^– با الکترون‌هایی است که از طریق مدار خارجی به این الکترود رسیده‌اند. برای تسهیل انتقال الکترون، زیرلایه با یک کاتالیست پوشیده می‌شود. کاتالیست مرسوم مورد استفاده پلاتین است که عموماً به روش تجزیه گرمایی محلول اتانولی H₂PtCL₆ بر روی زیرلایه، لایه نشانی می‌شود [۸۷]. این کاتالیست باید پایداری بالا، چسبندگی خوب به زیرلایه، قیمت مناسب و شفافیت کافی نیز داشته باشد. شفافیت رلایه کاتالیست به ویژه در مواردی که نورتابی از سمت کاتد انجام می‌شود بسیار مهم است [۸۸].
۴-۴-۱-۵- جاذب نور
جاذب نور یا حساس کننده در درجه اول تعیین کننده مقدار جریانی است که می‌تواند در سلول خورشیدی تولید شود. بنابراین برای جذب کل یا بخش اعظم نور خورشید، به ماده جاذبی با ضریب جذب بالا و بازه جذب پهن مورد نیاز است. نکته مهم دیگر این است که یک حساس کننده باید تماس خوبی با رسانا، برای تزریق الکترون داشته باشد. بطور مرسوم از رنگدانه‌های مولکولی برای این کار استفاده می‌شود. رنگ Z907 نوعی رنگدانه است که به عنوان حساس کننده در سلول خورشیدی به کار می‌رود. این رنگ در دمای ۸۰ درجه سانتی‌گراد حتی در ١٠٠٠ ساعت، هیچ تجزیه ای از خود نشان نمیدهد[۹۲- ۸۸].
۴-۴-۲- اصول عملکرد سلول خورشیدی رنگدانه‌ای
اصول عملکرد سلول‌های خورشیدی رنگدانه‌ای در شکل ۴-۱ خلاصه شده است. برای ایجاد جریان در سلول خورشیدی رنگدانه‌ای پدیده‌های زیر اتفاق می‌افتد: با جذب نور توسط رنگدانه، مولکول رنگدانه برانگیخته می‌شود به این معنی که الکترون از بالاترین تراز اشغال شده به پایین‌ترین تراز اشغال نشده در مولکول رنگدانه منتقل می‌شود. پس از آن الکترون به یک تراز در باند هدایت ZnOمنتقل می‌شود و رنگدانه اکسید شده با دریافت الکترون از الکترولیت احیا می‌شود. الکترون منتقل شده، در لایه ZnO نفوذ کرده، تا آنجا که به محل تماس با زیرلایه رسیده و به مدار خارجی منتقل می‌شود. سپس الکترون از طریق واکنش کاهش الکترولیت در الکترود مخالف به سلول باز می‌گردد. مدار الکتریکی سلول با انتقال یونی جفت اکسایش/کاهش در الکترولیت کامل می‌شود [۹۳].
شکل (۴ – ۱) طرحواره و نحوه عملکرد سلول‌های خورشیدی رنگدانه‌ای
فصل پنجم
تولید نانو ساختارهای ترکیبی اکسید روی
۵-۱ – مقدمه
ویژگی‌های هندسی آرایه‌ی نانوسیم‌های اکسیدروی از قبیل قطر و طول نانوسیم‌ها با پارامترهای مختلفی مانند دمای محلول، زمان رشد و نانوپروس‌های اکسیدروی از قبیل قطر با پارامترهای مختلفی مانند ولتاژ، زمان و دما قابل کنترل است. در این فصل به سنتز نانوساختارهای ترکیبی اکسیدروی به دو روش هیدروترمال و الکتروانباشت می‌پردازیم. فرایند الکتروانباشت در ولتاژهای مختلف انجام گرفته و تأثیر ولتاژ بر مورفولوژی نانوساختارهای حاصل بررسی می‌شود.
۵-۲- تمیزکاری
در بیشتر کارهای علمی– تحقیقاتی و یا حتی تولید قطعات پیشرفته، زیرلایه باید از سطح بسیار تمیزی برخوردار باشد. خصوصاً در وسایلی که با نور سروکار دارند، تمیز بودن سطح از اهمیت بسیار بالایی برخوردار است. هر ماده­ ناخواسته بر روی زیرلایه آلودگی محسوب می‌شود. اگر زیرلایه در معرض هوای آزاد قرار بگیرد و یا بدون احتیاط لازم جابجا و دستکاری شود، آلوده خواهد شد، در این صورت کیفیت لازم در لایه­ی نازک ایجاد نمی­ شود. معمولاً ذرات آلودگی با نیروی چسبندگی بالایی به زیرلایه می­چسبند. در نتیجه برای جداسازی آن‌ها باید فرایندهای مختلف تمیزکاری ^[۷۹] بسته به نوع و مقدار آلودگی انجام شود. همه آلودگی­ها با یک روش پاک نمی­شوند و باید با توجه به شرایط موجود از روش‌های مختلف استفاده کرد. یکی از روش‌های پرکاربرد در فرایند تمیزکاری، استفاده از شاره­های تمیزکننده می­باشد که از نظر شیمیایی حلال محسوب شده و آلودگی‌ها را در خود حل می­ کند. برای این کار زیرلایه را با بهره گرفتن از آلتراسونیک (شکل ۵ – ۱ ) در حمام‌های آب و صابون، الکل صنعتی و استون هر یک به مدت ۱۰ دقیقه شستشو می­دهیم. هنگام شستشو، سمت رسانا باید به سمت بالا باشد.
شکل (۵ – ۱) شستشوی زیرلایه با بهره گرفتن از آلتراسونیک
۵-۳- تولید نانو ساختارهای ترکیبی اکسید روی
در این پروژه نانوساختارهای ترکیبی اکسیدروی را به دو روش هیدروترمال و الکتروانباشت تولید می‌کنیم. فرایند الکتروانباشت در ولتاژهای مختلف انجام گرفته و و تاثیر ولتاژ بر مورفولوژی نانوساختارهای حاصل بررسی می‌شود. ساخت نانوساختارهای ترکیبی به دو روش مختلف انجام می‌شود:
رشد نانوسیم‌های اکسیدروی تولید شده به روش هیدروترمال بر روی نانوپروس‌های اکسیدروی تولید شده به روش الکتروانباشت
رشد نانوپروس‌های اکسیدروی تولید شده به روش الکتروانباشت بر روی نانوسیم‌های اکسیدروی تولید شده به روش هیدروترمال
۵-۳-۱- رشد نانوسیم اکسیدروی بر روی نانوحفره اکسیدروی
۵-۳-۱-۱- تولید نانوحفره
درگام اول از روش الکتروانباشت استفاده کرده و نانوساختارهای اکسیدروی را تولید می‌کنیم. ابتدا یک محلول M 04/0 از آب دیونیزه (DI water)و اتانول C₂H₅OH)) با خلوص ۹/۹۹%، هگزاهیدرات نیترات روی (Zn(NO₃)₂) ، هگزا‌متیلن‌تترامین (HMTA(CH₂)₆N₄ و پلی‌وینیل‌پیرولیدون C₆H₉NO)_n)، با نسبت مولی یکسان، تهیه می‌کنیم. سپس زیر لایه شیشه‌ای FTO به عنوان کاتد ‌‌ و فلز روی را به عنوان آند درون راکتور واکنشی یا همان سلول آزمایش قرار می‌دهیم. در فرایند رشد به روش الکتروانباشت، جنس زیرلایه از اهمیت خاصی برخوردار است. زیرلایه باید رسانا باشد تا بتوان از آن بعنوان یک الکترود در سلول شیمیایی استفاده کرد. همچنین به منظور بررسی امکان استفاده از این نانوساختارها در قطعات فوتوولتایی، از جمله سلول خورشیدی رنگدانه‌ای، باید از زیرلایه‌هایی استفاده کرد که شفاف باشند. FTO نیمه‌رسانایی با خواص عالی شفافیت و رسانندگی است، که امروزه به طور گسترده‌ای در صنایع اپتوالکتریک مورد استفاده قرار گرفته است. کاتد را در فاصله cm 2 آند می‌گذاریم. آند را به قطب مثبت و کاتد را به قطب منفی باتری وصل می‌کنیم. مدت واکنش در حدود نیم ساعت و دمای آن ۵۰ درجه سانتی‌گراد انتخاب شده است. ظرف حاوی محلول به منظور پایداری حرارتی بیشتر در درون یک حمام آب قرار داده شد و داخل این حمام از یک همزن مغناطیسی به منظور یکنواخت‌سازی دما استفاده شد. پس از اتمام واکنش، زیرلایه‌ را از محلول خارج کرده و با آب مقطر شستشو می‌دهیم. شکل ۵ – ۲ تصویر میکروسکوپ الکترونی روبشی نانوساختار بدست آمده را نشان می‌دهد.
شکل( ۵ – ۲) تصویر SEM از رشد نانو ساختارهای اکسید روی
۵-۳-۱-۲- تولید نانوسیم
درگام دوم از روش هیدروترمال استفاده کرده و نانوسیم‌های اکسیدروی را بر روی نانوساختارهای بدست آمده در مرحله اول رشد می‌دهیم. همانطور که قبلا گفته شد، در این روش فرایند رشد در دو مرحله صورت می‌گیرد.
۵-۳-۱-۲- ۱- تولید پوشش دانه‌ای
در مرحله اول از استات روی (Zn(CH₃CO₂)₂) با غلظت mM 5، حل شده در اتانول، برای ایجاد لایه دانه‌ای استفاده می‌کنیم. با روش لایه‌نشانی غرقی^[۸۰]، یا چکاندن قطره، زیرلایه‌ها با لایه‌ای از محلول اتانولی استات‌روی، پوشش داده می‌شوند. این مرحله به منظور بهبود کیفیت لایه دانه‌ای، چند بار تکرار می‌شود و پس از هر بار لایه‌نشانی (پس از ۱۰ ثانیه) زیرلایه با اتانول خالص شسته شده و در جو نیتروژنی خشک می‌گردد. یه این ترتیب زیرلایه، با فیلم نازک استات‌روی، پوشیده می‌شود. این فیلم نازک در کوره در دمای ۳۵۰ درجه سانتی‌گراد ، به مدت ۳۰ دقیقه، بصورت ZnO جزیره‌ای (دانه‌ای) در می‌آید.
۵-۳-۱-۲- ۲- رشد آرایه‌های نانو‌سیمی به روش هیدروترمال
در ابتدا یک محلول آبی mM25 از هگزاهیدرات نیترات روی (Zn(NO₃)₂) و هگزامتیلن‌تترامین (HMTA(CH₂)₆N₄) ، با نسبت مولی یکسان، تهیه می‌شود. سپس زیرلایه‌‌های دانه‌دار را درون محلول قرار می‌دهیم. به منظور جلوگیری از توده شدن نانوذرات بر روی سطح FTO، زیرلایه‌ها بصورت معلق و رو به پایین، درون محلول قرار داده می‌شوند. محلول را درون آون و در دمای ۷۵ درجه سانتی‌گراد قرار می‌دهیم. مدت واکنش در حدود ۳ ساعت انتخاب شده است. پس از اتمام واکنش، زیرلایه‌ها تا دمای اتاق سرد شده، سپس از محلول خارج می‌شوند. در این مرحله، ابتدا زیرلایه‌ها با آب مقطر شسته شده، سپس برای بهبود ساختار بلوری ZnO و برداشتن آلودگی‌های آلی و غیرآلی بجا مانده از محلول واکنش، زیرلایه‌ها در دمای ^◦ C 450، بمدت ۳۰ دقیقه، حرارت داده می‌شوند. نانوسیم‌های ساخته شده به این روش، ساختار بلوری شش‌گوشه دارند. تصاویرSEM ، ساختار شش‌گوشه بودن نانوسیم‌های تشکیل شده را بخوبی نشان می‌دهد ( شکل۵-۳).
شکل (۵ – ۳ ) طرحواره‌‌ی راکتور طراحی شده جهت روش هیدروترمال که شامل قسمت های ۱– گرمکن ۲- ظرف شیشه ای و سر پوش ۳- محلول واکنش دهنده ۴- حمام پارافین ۵- استوانه شیشه ای به عنوان پایه ۶- زیر لایه ITO می باشد.
شکل (۵-۴ ) سامانه استفاده شده برای رشد آرایه‌های نانوسیمی، به روش هیدروترمال
شکل( ۵ – ۵) تصویر SEM از رشد نانو ساختارهای اکسید روی در مرحله ی هیدروترمال
همچنانکه در شکل‌های ۵-۵ و ۵-۶ مشاهده می‌شود با توجه به اینکه زیرلایه جهت مرحله هیدروترمال، نانوساختار بوده است، نانوساختارهای مرحله دوم دارای نانوسیم‌ها با ضخامت مختلف است در حالیکه اگر زیرلایه صاف بود یک نانوساختار با نانومیله‌های تقریباً هم قطر بوجود می‌آمد.
شکل( ۵ – ۶) تصویر SEM از رشد نانو ساختارهای اکسید روی در مرحله ی هیدروترمال بر روی زیرلایه صاف و خام FTO

۳۰۰۰bp
L
۲
۱
شکل۱۰-۳- هضم آنزیمی ناقل‏های استخراج شده از کلونی­های حاصل از واکنش اتصال وکتور pGEM و hrpw و همچنین hrpG و pUC19
L: مارکر Kb1، ۱: pUC19-hrpG، ۲: pGEM-hrpW
تایید همسانه­سازی ژن­های hrpW/G در ناقل­های کلونینگ با روش واکنش زنجیره­ای پلیمراز
برای اطمینان بیشتر با بهره گرفتن از ناقل‏های مورد تایید مرحله­ قبل بعنوان الگو، واکنش زنجیره­ای پلیمراز با آغازگرهای اختصاصی طراحی شده صورت گرفت که نتایج حاصل تاکیدی موکد بر صحیح بودن و انجام همسانه‏سازی ژن­های موردنظر در ناقلین مربوطه بود.

(( اینجا فقط تکه ای از متن درج شده است. برای خرید متن کامل فایل پایان نامه با فرمت ورد می توانید به سایت feko.ir مراجعه نمایید و کلمه کلیدی مورد نظرتان را جستجو نمایید. ))

با توجه به شکل زیر و عدم وجود باند در نمونه­ پلاسمید فاقد ژن خارجی در واکنش و حضور باندهای ۹۱۲ و ۷۹۲ جفت بازی در استفاده از پلاسمیدهای نوترکیب بعنوان الگو، مبین موضوع مذکور می­باشد.
۷۹۲bp
۹۱۲bp
L
۱
۲

۳

۱
شکل۱۱-۳- الکتروفورز محصول واکنش زنجیره­ای پلیمراز پلاسمیدهای تایید شده بر روی ژل آگارز ۱%
L: مارکر Kb1، ۱: hrpw، ۲: وکتور غیر نوترکیب، ۳: hrpG
همسانه­سازی ژن­های hrpG/W در ناقل بیانی pBI121
وکتور بیانی pBI121 دارای استفاده گسترده­ای برای تراریزش گیاهان است. طول این پلاسمید ۱۴۷۵۰ جفت باز می­باشد. ناحیه T-DNA (6193 جفت باز) این وکتور از بخش­هایی متشکل از مرز راست، نشانگر انتخابی برای تشخیص گیاهان تراریخته از غیر تراریخته، مشتمل بر پیشبر NOS، ژن nptII ، ترمیناتور NOS و ژن گزارشگر بتاگلوکورونیداز مشتمل بر، پش‏برد CaMV355، ژن gus و ترمیناتور NOS و مرز چپ می‏باشد. با این تفاسیر این وکتور بعنوان ناقل ایده­آل و در راستای هدف ما جهت انتقال ژن‏های هدف به گیاه میزبان تحت پیشبر و ترمیناتور مناسب انتخاب شد. در این پژوهش ژن hrpW می­بایست جایگزین ژن gus در پلاسمید pBI121 می­شد، بطوریکه پیشبر۳۵S و ترمیناتور NOS را دریافت کند و همچنین ژن hrpG نیز به گونه ­ای می­بایست وارد شود که ژن gus نیز در یک قالب با ژن مذکور قرار می­گرفت، که بدین منظور با حذف کدون خاتمه در انتهای َ۵ آغازگر برگشتی تعریف شده برای hrpG این امر محقق شد.
با توجه به وجود دو سازه که یکی بدون gus و دیگری با حفط ژن gus همراه می­باشد و همچنین نیاز به حفظ پشبر و ترمیناتور (Nos, 35S) مربوطه و در راستای مطالعات قبلی مربوط به توالی­های نوکلئوتیدی ژن­های hrpG , hrpW جایگاههای SacI , XbaI به منظور همسانه‏ سازی ژن hrpw و جایگاهها BamHI , XbaIبه منظور همسانه‏سازی ژن hrpG گزینش گردید.
هدف از حفظ gus.intron در سازه­ی pBI.hrpG و حذف آن از سازه­ی دیگر مطالعه­ بیان پروکاریوتی در سلول میزبان گیاهی بود، با توجه به اینکه بیان ژن­های hrp تحت تاثیر شرایط محیطی آپویلاست در گیاه تنظیم می­ شود، انتظار می­رود که بیان پروکاریوتی ژن­های hrp در پاسخ به شرایط آپوپلاستی گیاه میزبان باکتری آگروباکتریوم نزدیک به صفر باشد، که این شیوه صحت یا عدم صحت این فرض را با آنالیزهای بیان از بافت گیاهی نشان می­دهد.
حال به منظور همسانه‏سازی ژن‏های hrpG و hrpW در pBI121، آنها را تحت تاثیر آنزیم‏های برشی تعیین شده برای هر کدام یعنی XbaI/SacI برایXbaI/BamHI , pBI/hrpW برای pBI/hrpG برش داده و پس از الکتروفورز بر ژل آگارز و متعاقباً بازیابی آن (شکل۱۴-۳) واکنش اتصال بین آنها با توجه به شرایط بهینه اتصال صورت پذیرفت. لازم به ذکر است که تعیین غلظت قطعه الحاقی و ناقل بر اساس (شکل ۱۵-۳) حاصل از الکتروفورز محصول بازیابی شده بر روی ژل آگارز تعیین شد.
۴
۵
L
۳
۱۳.۸kb
۶
L
۲
۱
۱.۸kb
الف
ب
شکل۱۲-۳- هضم آنزیمی ناقل بیانی جهت بازیابی از روی ژل آگارز (الف) قطعات بازیابی شده (ب)
L: مارکر Kb1، ۱-۲: قطعات ریکاوری شده pBI121 (XbaI/BamHI) 3: قطعه‏ی ریکاوری شده pBI121 (XbaI/SacI)
۴-۵: قطعات برش خورده pBI121 (XbaI/BamHI) 6: برش خورده pBI121 (XbaI/SacI)
۷

۳-۲-۲-۲ موارد طلاق قضایی
طلاق توسط قاضی بدون دخالت زوج را در اصطلاح طلاق قضایی می گویند. با توجه به این تعریف زن می تواند از محکمه درخواست طلاق کند و دادگاه نیز با احراز شرایط و علی رغم میل شوهر، زن را طلاق خواهد داد. این موارد عبارت اند از:
۱ـ استنکاف شوهر از پرداخت نفقه و عدم امکان الزام وی به انفاق
۲ـ غایب مفقودالاثر بودن شوهر
۳ـ در عسر و حرج بودن زوجه، در صورت ادامه دادن به زندگی زناشویی طلاق به علت ترک انفاق
در ماده ۱۱۲۹قانون مدنی چنین آمده است: « در صورت استنکاف شوهر از دادن نفقه و عدم امکان اجراء حکم محکمه و الزام او به دادن نفقه زن می تواند برای طلاق به حاکم رجوع کند و حاکم، شوهر او را اجبار به طلاق می نماید. همچنین است در صورت عجز شوهر از دادن نفقه »

( اینجا فقط تکه ای از متن پایان نامه درج شده است. برای خرید متن کامل فایل پایان نامه با فرمت ورد می توانید به سایت feko.ir مراجعه نمایید و کلمه کلیدی مورد نظرتان را جستجو نمایید. )

در این ماده دو مسأله قابل بررسی است:
۱ـ استنکاف شوهر از دادن نفقه: با استناد به آیه ۳۴ سوره نساء^۱: «مردان را بر زنان تسلط و حق نگهبانی است به واسطه آن برتری که خدا برای بعضی بر بعضی مقرر داشته و هم به واسطه آنکه مردان از مال خود نفقه دهند ، پس زنان شایسته مطیع شوهران و در غیبت آنان حافظ ( حقوق آنها ) باشند از آن رو که خدا هم ( حقوق زنان را ) حفظ فرموده است. و زنانی که از نافرمانی آنان ( در حقوق همسری ) بیمناکید باید نخست آنان را موعظه کنید و ( اگر مطیع نشدند ) از خوابگاه آنان دوری گزینید و ( اگر باز مطیع نشدند ) آنان را به زدن تنبیه کنید ، چنانچه اطاعت کردند دیگر راهی بر آنها مجویید، که همانا خدا بزرگوار و عظیم الشأن است»
۱- « الرِّجالُ قَوَّامُونَ عَلَى النِّساءِ بِما فَضَّلَ اللَّهُ بَعْضَهُمْ عَلى‏ بَعْضٍ وَ بِما أَنْفَقُوا مِنْ أَمْوالِهِمْ فَالصَّالِحاتُ قانِتاتٌ حافِظاتٌ لِلْغَیْبِ بِما حَفِظَ اللَّهُ وَ اللاَّتی‏ تَخافُونَ نُشُوزَهُنَّ فَعِظُوهُنَّ وَ اهْجُرُوهُنَّ فِی الْمَضاجِعِ وَ اضْرِبُوهُنَّ فَإِنْ أَطَعْنَکُمْ فَلا تَبْغُوا عَلَیْهِنَّ سَبیلاً إِنَّ اللَّهَ کانَ عَلِیًّا کَبیراً»
بر این اساس تأمین هزینه های خانواده از وظایف مرد است و همانطور که در فصل گذشته گفتیم این امر قابل تفویض به زن نخواهد بود و نیز نفقه باید با جایگاه اجتماعی زن و امکانات شوهر متناسب باشد و نمی توان برای آن اندازه معین و ثابتی در نظر گرفت.
با این توضیح چنانچه شوهر از پرداخت نفقه به زن خودداری کند، حاکم می تواند بین آن دو حکم طلاق را جاری سازد.
۳-۲-۲-۲-۱ عجز شوهر از پرداخت نفقه
منظور از عجز ، ناتوانی شوهر پس از عقد نکاح است و نه پیش از آن، زیرا این عجز هم ردیف با خودداری شوهر از پرداخت نفقه آمده که مربوط به پس از نکاح است.
در این مورد که در صورت عجز شوهر از پرداخت نفقه آیا زوجه و حاکم حق فسخ دارند یا نه، نظریاتی مطرح است که قانون مدنی ما در ماده ۱۱۲۹ از این نظر پیروی کرده است که : زن حق فسخ ندارد و تنها می تواند به حاکم مراجعه و درخواست کند که زوج را به طلاق وادار کند و در این صورت اگر زوج طلاق نداد خود حاکم اقدام به طلاق می کند.
۳-۲-۲-۲-۲ طلاق زوجه غایب مفقودالاثر

آنیونهای خاک

۰۰۰۵۲/۰

۰۰۰۱۱۷۵/۰

کلر محلول

۰۰۰۱۴/۰

۰۰۰۰۳۲۲/۰

به منظور درک بهتر نتایج تجزیه و تحلیل حساسیت، نتایج حاصل از تجزیه و تحلیل مدل کیفیت خاک را به صورت نمودار اثر طیف رنگی متغیرهای مختلف نمایش داده شده است. شکل ۴-۳۶ به نتایج حساسیت سنجی تک تک متغیرهای نمودار اثر بر متغیر هدف در مدل کیفیت خاک می ­پردازد. در این نمودار درجه رنگ هر متغیر؛ نشان دهنده میزان حساسیت گره نهایی یعنی گره کیفیت خاک می­باشد. در واقع هر چه رنگ متغیر در نمودار تیره­تر باشد به معنی حساسیت بیشتر کیفیت خاک به این متغیر و یا اثر آن متغیر بر کیفیت خاک است . برای مثل از میان دو متغیر خصوصیات فیزیکی و شیمیایی خاک به عنوان متغیرهای تاثرگذار بر کیفیت خاک، خصوصیات شیمیایی اثر بیشتری داشته و با رنگ تیره­تر نشان داده شده است. در کنار رنگ هر متغیر شماره مربوط به تاثیر­گذاری هر متغیر بر متغیر هدف قرار گرفته است.

(( اینجا فقط تکه ای از متن درج شده است. برای خرید متن کامل فایل پایان نامه با فرمت ورد می توانید به سایت feko.ir مراجعه نمایید و کلمه کلیدی مورد نظرتان را جستجو نمایید. ))

شکل ۴-۳۶- نمودار اثر نمایش دهنده نتایج تجزیه و تحلیل حساسیت بر گره نهایی مدل کیفیت خاک را نشان می دهد که هر چه رنگ نمایشی متغیر تیره­تر باشد، حساسیت گره نهایی به آن متغیر بیشتر بوده و اثر این متغیر بر گره نهایی یعنی کیفیت خاک نیز بیشتر خواهد بود. همچنین رتبه اثر هر یک از گره­ها بر گره­نهایی مشخص شده است. به عنوان مثال متغیر خصوصیات شیمیایی خاک با رتبه ۱ بیش ترین اثر و متغیر کلر محلول در خاک با رتبه اثر ۱۳ کم ترین اثر را بر کیفیت خاک در منطقه دارند.
۴-۴-۳-ارزیابی مدل با بهره گرفتن از مدل های تجربی
آخرین مرحله از اعتبار­سنجی مدل­های شبکه ­های باور بیزین تهیه شده، اعتبار­سنجی آن به کمک معیارهای مدل مدالوس می باشد. در این مطالعه مدل­های BBN تهیه شده در زمینه خاک، آب ، فرسایش بادی و بیابان­زایی با معیارها و مدل نهایی مدالوس مقایسه شد. به عنوان مثال با مقایسه خروجی مدل BBN تهیه شده برای کیفیت خاک، در هر واحدکاری و امتیاز معیار خاک مدل مدالوس در هر واحدکاری، صحت پیش بینی مدل تعیین شد ( جدول ۴-۲ ).
جدول ۴-۱۲- .کیفیت خاک پیش بینی شده و برآورد شده در هر واحد کاری با بهره گرفتن از شبکه ­های باور بیزین و مدل مدالوس را نشان می دهد. در واحد هایی که امتیاز معیار خاک در مدل مدالوس به عدد ۲۰۰ نزدیک تر باشد نشان دهنده کیفیت خاک نامناسب است که شبکه ­های باور بیزین نیز به درستی کیفیت خاک را در هر واحد کاری پیش بینی کرده ­اند.

کیفیت خاک پیش بینی شده از نظر بیابان­زایی با بهره گرفتن از شبکه های باور بیزین (%)

امتیاز معیار خاک در مدل مدالوس

واحدکاری

Poor

Moderate

Good

۴/۲۲

۴/۲۲

۲/۵۵

۱۵۲

۱-۱-۱

۱/۱۵

۵/۱۵

۴/۶۹

۱۵۱

۱-۱-۲

۱/۳۰

۸/۲۷

۱/۴۲

۱۴۲